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建立肿瘤研究模型,需要斟酌的「4个重要问题」

创作时间:
2025-01-22 04:15:38
作者:
@小白创作中心

建立肿瘤研究模型,需要斟酌的「4个重要问题」

在肿瘤研究领域,建立合适的动物模型是开展有效研究的基础。无论是传统的小分子抗肿瘤药物,还是目前火热的肿瘤免疫疗法,都需要在早期研究阶段考虑多个关键因素。本文将重点讨论在建立肿瘤研究模型时需要斟酌的四个重要问题,为科研人员提供参考。

肿瘤类别与小鼠免疫缺陷程度的关系

在建立肿瘤异种移植模型时,肿瘤的类别和小鼠的免疫缺陷程度之间存在一定的“模糊对应关系”。一般来说,最常用的裸鼠、SCID鼠即可满足大多数肿瘤细胞系的荷瘤鼠造模需求。然而,对于某些特殊类型的肿瘤,如淋巴瘤和转移瘤,在常规免疫缺陷鼠上可能难以成功建模。在这种情况下,使用(超)重度免疫缺陷模型(如NOG小鼠)可以取得更好的效果。

例如,Dewan MZ等研究者在将霍奇金淋巴瘤移植到NOG小鼠的实验中发现,在未对动物进行全身辐照或自然免疫阻断预处理的条件下,移植30-60天内肿瘤的形态和CD30标志物表达都能保持和原始肿瘤接近。Ninomiya M等研究者在胰腺癌细胞系的转移评估实验中也发现,在NOG小鼠身上能观察到更多的肿瘤转移现象。


PDX模型的构建

临床前试验成功的候选药物,最终只有少于10%的比例获准进入市场,对抗肿瘤药物而言,这一数字更低,约为5%。临床转化率如此低的一个重要原因是缺乏适当的人类癌症模型。PDX模型是将肿瘤组织以组织的形式移植至免疫缺陷鼠体内,没有经过任何人工培养,因此较完整地保留了肿瘤的生物学特性,保持了肿瘤的异质性,与临床相似度更高,是现阶段最可靠的肿瘤动物模型。

制备PDX模型时,除了要评估移植成功率,更重要的一点是要保持原始肿瘤的生物学特性,这使得PDX建模难度较高。而超重度免疫缺陷鼠(NOG、NSG)的引入,逐渐解决了以上困境:对肿瘤的选择压力小,为原发肿瘤的移植提供了最佳环境。例如Fujii E等研究者在Pathology International发表的文献中,利用NOG小鼠建立的胃肿瘤和结肠肿瘤PDX模型的病理形态与原始肿瘤样本相似。

是否需要人源化免疫系统改造

这取决于研究是否需要人免疫系统的参与。很多研究中的肿瘤药物(如化疗药、小分子抗肿瘤药物、肿瘤抗体靶向药等)作用靶点在于肿瘤细胞,将人源肿瘤细胞移植到免疫缺陷小鼠体内,建立的CDX/PDX肿瘤异种移植模型即可满足药物筛选需求。

但如果是目前火热的肿瘤免疫疗法,例如PD-1/PD-L1免疫检查点抑制剂、双特异性抗体等,其药物靶点在于人的免疫系统,要想实现 “人免疫系统与人源肿瘤”的相互作用,就需要在小鼠体内建立“模拟的”人免疫系统。药物研发人员确定所研药物的靶点在某种特定免疫细胞后,下一步需要寻找对应的免疫系统重建模型,此时通常需要动物模型专家与研发人员的更深入的沟通来确定。

动物模型的其他属性因素

要获得稳定性高、可重复性好的实验结果,实验动物本身的技术属性只是一个重要方面,还有几个容易被忽视的关键因素需要考虑:

  1. 备选细胞系/肿瘤组织是否经过微生物检测,排除其携带影响实验可重复性的病原体?
  2. 备选品系是否来自于生物安全管理严格的设施,确保其不携带影响实验结果判定的病原体?
  3. 备选品系是否有严格的遗传管理程序,保障其表型没有受到“遗传漂变”的影响?

如果研究使用经过传代操作的细胞系建立CDX模型,要考虑传代过程中发生污染的可能性,推荐对其进行微生物检测。此外,来源设施的生物安全管理体系和遗传管理程序如何——这些细节也许是与采购和实验设施管理人员更关注的问题;那么对于研究人员,除了通过引种证明、遗传学鉴定、表型鉴定等技术指标可以作为判别“遗传管理”的参照,可能要考虑计划采购动物模型的供应商的历史、积淀等“软性因素”,最大程度降低这些技术品质以外的因素对实验可重复性的影响。

小结

综上所述,建立肿瘤研究模型前,有四个主要因素需要重点考虑:

  1. 根据肿瘤种类选择合适的免疫缺陷动物
  2. PDX模型如何保持与原始肿瘤相似的生物学特性
  3. 是否需要对动物模型进行人源化免疫系统改造
  4. 动物模型属性外因素:生物制品污染、微生物状况、遗传管理

参考文献

  1. DewanMZ,WatanabeM,AhmedS,TerashimaK,HoriuchiS,SataT,HondaM,ItoM,WatanabeT,HorieR,YamamotoN.(2005)Hodgkin’slymphomacellsare effciently engrafted and tumor marker CD30 is expressed with constitutive nuclear factor- B activity in unconditioned NOD/SCID/gammacnull Cancer Sci., 96(8):466- 473.
  2. NinomiyaM,AbeA,KatsumiA,XuJ,ItoM,AraiF,SudaT,ItoM,KiyoiH,KinoshitaT,NaoeT.(2007)Homing,proliferationandsurvival sites of human leukemia cells in vivo in immunodeficient mice. Leukemia, 21:136-142.
  3. Yaguchi T,Kobayashi A,Inozume T , et al. Human PBMC-transferred murine MHC classI/II-deficient NOG mice enable long-term evaluation of human immune responses[J]. Cellular & Molecular Immunology,2017.
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