实验动物病理取材步骤以及注意事项，附不同脏器取材细节

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实验动物病理取材步骤以及注意事项，附不同脏器取材细节

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https://www.meifengli.com/list_44/3034.html

在生物医学研究中，实验动物病理取材是获取准确实验数据的关键步骤。本文详细介绍了病理实验动物取材的完整流程和注意事项，包括取材前的准备工作、基本要求、不同脏器的取材细节以及取材后的病理分析要点。

取材前准备

进行病理实验动物取材前，需要充分准备相关工具和试剂。具体包括：

取材用具：动物固定板、外科手术刀、镊子、解剖剪刀、滤纸纱布、固定容器、固定液以及实验记录本等。如果需要对脏器进行称量或拍照，还需准备天平、尺子和标签。
所需试剂：麻醉剂、固定液和生理盐水。
废物存放：应使用有明显标志的黄色垃圾袋来存放动物尸体和废弃脏器，锐器盒则用于存放废弃的针头、刀片和注射器等。

取材基本要求

在进行取材时，需要遵循以下基本要求：

动物麻醉及处死过程应迅速进行，这既符合动物伦理要求，也能避免动物组织死后自溶，从而影响实验结果的准确性。
在取材时，应对动物模型的外表和脏器进行肉眼观察，并做相应的实验记录。
取材人员应对所取样本有充分了解，取材过程要迅速。对于易自溶的组织，如肠道和腺体，应优先处理。
取材时使用的剪刀和刀片应保持锋利，镊子尽量避免使用齿镊，夹取脏器时应用无齿镊夹住其周围的结缔组织。
如无特殊要求，所选组织应尽量包含脏器的全部层次或重要结构。若相同器官需要多次取材，选材部位应尽量保持一致。
剖检应在设有解剖台的解剖室内进行，小动物可在大小适宜的搪瓷盘内进行。剖检完成后，应及时对用具和场地进行严格消毒，特别是处理死于传染病的动物尸体时，要严防病原扩散。
动物尸体应及时收入冰柜，并按照医疗垃圾的处理方法进行妥善处理。

注：动物尸检时，常被忽视的体表检查也非常重要。例如，四肢水肿可能提示动物生前患有心脏、肝脏、肾脏或关节炎症等疾病；尾巴坏死可能是外伤（如夹伤、打斗等）或注射时损伤血管导致血液供应不足造成的；天然孔如口腔、鼻孔周围有血液，可能是食道或上呼吸道损伤；肛门周围污秽则可能提示动物生前有腹泻现象，多患有肠道疾病等。

病理实验动物各脏器取材细节

注意事项

在进行病理实验动物取材时，需要注意以下事项：

若发现肉眼可见的病变，应认真观察并准确选取病变部位的组织，切勿漏取，以确保全面反映组织病变的全貌。同时，需要由表及里地观察病变状况，测量重量、记录部位和体重等。
根据实验方法、目的以及病变情况，应尽量多取材，并确保所选取的组织材料包含各脏器的主要结构部分。
应避免选取因解剖失误造成的凝血块和坏死组织等。
在取病理材料时，应避免压挤（以免组织变形）、刮抹（以免组织缺损）和冲洗（以免红细胞和其他细胞吸水肿胀破裂）。
所取的材料应尽量保持肉眼标本的完整性，厚度不宜过厚或过薄。建议选用1.5cm×1.5cm×0.5cm的取材规格。
在组织分离时，应注意钝性分离，避免用器械直接夹伤组织。如果脏器上附有血液、黏液等污物，应用生理盐水冲洗后再进行固定。如果血液过多导致固定液变色，应及时更换固定液。
胃肠标本在取材前应将内容物冲洗干净。
对于肝肾等较大的脏器，可以先将其切成较薄的块状组织进行固定，或者稍固定后再切成片状继续固定。
对于垂体、肾上腺、甲状腺等小组织，应平铺于滤纸上再进行固定。