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蛋白质定量/蛋白质含量的测定(LOWRY法)实验原理

创作时间:
作者:
@小白创作中心

蛋白质定量/蛋白质含量的测定(LOWRY法)实验原理

引用
1
来源
1.
https://qybio.biomart.cn/news/3228441.htm

Lowry法是生物化学和分子生物学中常用的蛋白质定量方法之一,其原理是将蛋白质与碱性铜溶液反应生成铜-蛋白质络合盐,再加入酚试剂,通过颜色反应来定量蛋白质含量。该方法灵敏度高,适用于微量蛋白质的定量分析,在科研和工业生产中具有广泛的应用价值。

实验原理

Lowry法是双缩脲法和福林酚法的结合与发展,其原理是:蛋白质溶液用碱性铜溶液处理,形成铜-蛋白质的络合盐,再加入酚试剂后,除使肽链中酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸等显色外,还使双缩脲法中肽键、碱性铜的显色效果更强烈。因此,Lowry法的显色效果比单独使用酚试剂强烈3~15倍,为双缩脲法100倍。由于肽键显色效果增强,从而减小了因蛋白质种类引起的偏差。

Lowry法的试剂由两部分组成,试剂甲相当于双缩脲试剂(碱性铜溶液),可与蛋白质中的肽键起显色反应;试剂乙为磷钨酸和磷钼酸混合液,在碱性条件下极不稳定,易被酚类化合物还原生成钼蓝和钨蓝混合物而呈蓝色反应,因此蛋白质的酪氨酸和胱氨酸等可显色,颜色深浅与蛋白质含量成正比。

主要试剂

  • Na2WO4•2H2O
  • Na2MoO4•2H2O
  • 85% H3PO4
  • 浓HCl
  • Li2SO4•H2O
  • 溴水
  • 酚酞指示剂
  • Na2CO3
  • NaOH
  • CuSO4•5H2O
  • 酒石酸钾钠

牛血清白蛋白:用水配成250mg/ml。

主要设备

  • 试管若干
  • 刻度吸管0.5ml,1ml,10ml
  • 定量加样器
  • 圆底烧瓶
  • 冷凝管一套(带橡胶管)
  • 微量滴定管
  • 小烧杯
  • 微量进样器50μl
  • 分光光度计

实验材料

可溶性蛋白质

实验步骤

1. 酚试剂的制备

(1)取Na2WO4•2H2O 100g,Na2MoO4•2H2O 25g 及蒸馏水700ml于1500ml的圆底烧瓶中,之后加入85% H3PO4 50ml,浓HCl 100ml。安上回流冷却装置(使用磨口接头。用软木塞或橡皮塞时,必须用锡泊包起来),使其慢慢沸腾10h。冷却后加入Li2SO4•H2O 150g,水50ml,浓HCl 100ml安上回流冷却装置,开口加热煮沸15min,以逐出过量的溴。冷却后稀释至100ml,并过滤入棕色瓶中,密闭于冰箱中保存。

使用时用标准NaOH溶液滴定,以酚酞为指示剂。滴定终点由蓝变灰。滴定后算出酸浓度,用时适量稀释,使最后浓度为1mol/L H+,此为Folin-酚试剂乙液。

(2)首先配制①4% Na2CO3溶液;②0.2mol/L NaOH溶液;③1% CuSO4溶液;④2%酒后石酸钾钠溶液;使用前①与②等体积混合配成Na2CO3-NaOH溶液;将③与④等体积混合配成硫酸铜一酒石酸钾钠溶液。然后将这两个溶液按50︰1混合;配成Folin-酚试剂甲液。此试剂只能用一天。

2. 标准曲线的绘制

(1)取7只试管编号,分别加0ml,0.1ml,0.2ml,0.4ml,O.6ml,0.8ml,1.0ml标准蛋白质溶液,用水补到1ml,便成为每管含蛋白为0mg,25mg,50mg,100mg,150mg,200mg,250mg标准系列(必要时可做重复)。

(2)加5ml试剂甲,混匀,于30℃放置10min。

(3)喷射加入0.5ml试剂乙,立即振荡混匀,在30℃下保温30min。

(4)准确到30分后,以不加标准蛋白的管为空白,在500nm波长下比色测定吸光度值。

(5)以蛋白浓度为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线。

3. 样品测定

(1)取50μl样液加入试管中,(样液提取一般按0.1g鲜样/ml比例,提取方法见各酶活测定)加蒸馏水补至1ml,然后重复步骤2的(2),(3),(4),以空白为参比,测吸光度值。

(2)根据吸光度值,查标准曲线求得蛋白质含量。

4. 结果计算

蛋白质含量(mg/g鲜重)= (C*V/a)/W

式中 C-查标准曲线得样品测定管中蛋白质含量(mg);
V-提取液总量(ml);
a-测定时取样液量(ml);
W-取样量(g)。

注意事项

  1. Folin试剂乙只在酸性条件稳定,故当其加到碱性的铜-蛋白质溶液中时,必须立即混匀,以便在磷钼酸-磷钨酸试剂被破坏前,还原反应即能发生。
  2. 为了保证反应进行完全,反应在25~30℃水浴中进行,反应30min后准时比色。
  3. 还原物质干扰本实验。

考马斯亮蓝法和LOWRY法两种方法均是灵敏度为微克级的高灵敏度定量测定蛋白质方法,前者稳定,后者简便;二者均优于现有的其它方法。

二者的缺点是:

  1. Lowry法受植物体内存在的酚类物质干扰;
  2. 考马斯亮蓝法在蛋白质含量很高时线性关系稍偏低,且不同蛋白质与色素结合状况有差异。

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