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细胞共培养的方法和注意事项

创作时间:
作者:
@小白创作中心

细胞共培养的方法和注意事项

引用
1
来源
1.
https://www.bio-review.com/co-culture/

细胞共培养(co-culture)技术是生物医学研究中的重要工具,它能够模拟体内细胞的微环境,帮助研究者深入了解细胞间的相互作用。本文将详细介绍细胞共培养的不同方法及其特点,并以Transwell共培养为例,提供详细的实验步骤和注意事项。

一、共培养方式

1. 直接共培养

定义:将两种或多种细胞直接种植在同一培养皿或培养板中。常用于研究细胞之间的直接接触及其影响,如免疫细胞对肿瘤细胞的杀伤效应。

优点:可以直接观察细胞间的相互作用。
缺点:可能导致细胞混杂,难以分离后续分析。

2. Transwell共培养

定义:使用Transwell系统将不同的细胞分隔在不同的层次中。上层细胞放在多孔膜的Transwell插入物中,下层细胞则在底部培养皿中。广泛用于研究细胞间的分泌因子和信号传导(如肿瘤细胞与成纤维细胞之间的相互作用)。

优点:通过分泌的信号分子进行相互作用,避免了细胞之间的直接接触,方便后续分离和分析。
缺点:无法模拟直接接触的细胞间相互作用。

3. 3D共培养

定义:将细胞种植在三维支架或基质中,使其在三维环境中生长和相互作用。用于更接近体内的细胞微环境,研究细胞在三维空间中的生长、分化和相互作用。

优点:更好地模拟组织中的细胞结构和功能。
缺点:技术复杂,成本较高。

4. 条件培养基共培养

定义:将一种细胞的培养基收集,经过处理后用于另一种细胞的培养,以研究细胞分泌的因子对另一种细胞的影响。

优点:简单,易操作。
缺点:无法模拟直接接触或更复杂的细胞间相互作用。

二、Transwell共培养步骤

下面将以Transwell共培养为例,详细阐述肿瘤细胞和成纤维细胞的共培养的具体实验步骤。

1. 材料准备

  • 细胞类型:选择要共培养的肿瘤细胞和成纤维细胞系NIH 3T3。
  • Transwell插入物:通常使用孔径为0.4 µm的Transwell插入物,以确保细胞之间只能通过分泌的因子交流,而不会直接接触。(一般的迁移、侵袭实验的孔径为8µm)
  • 培养基:选择合适的培养基,确保两种细胞都能生长。提前更换两种细胞都能生长的培养基。

2. 成纤维细胞接种

  • 取细胞汇合度70-80%的成纤维细胞,消化、离心、重悬后计数
  • 将成纤维细胞接种在Transwell的下层板(通常为6孔板或24孔板),为了观察成纤维细胞在肿瘤细胞细胞的共同培养下发生的变化,我们把主要观察的成纤维细胞铺在下室,方便后续的细胞收集。(通过收集下室的细胞,可以直接检测上室细胞的分泌物或信号对下室细胞的影响,比如细胞的增殖、凋亡、分化等变化。有助于研究细胞间的相互作用和影响。)
  • 铺板密度根据细胞增值情况而定。本次实验选择6孔板,每孔铺4×10⁵个NIH 3T3细胞覆盖底部。
  • 培养4小时,等待成纤维细胞贴壁后铺肿瘤细胞。

3. 肿瘤细胞接种

  • 取细胞汇合度70-80%的肿瘤细胞消化、离心、重悬后计数
  • 将肿瘤细胞接种在Transwell的上层隔膜上。在小室上方垂直悬空、匀速滴入肿瘤细胞悬液
  • 铺板密度密度根据实验需要进行调整(通常为5×104到2×105个细胞/插入物)。

4. 共培养

将共培养体系放入37°C、5% CO₂的培养箱中培养。培养时间根据实验目的选择。第一次实验可设置时间梯度例如24小时、48小时或更长时间。

5. 实验终点及分析

共培养后的细胞可用于细胞增殖、迁移、侵袭实验,检测细胞形态、分泌因子的变化,也可以提取RNA、蛋白质观察一系列变化等。

三、注意事项

  1. 细胞比例和密度:不同细胞系可能需要调整种植密度,确保实验数据具有可重复性。
  2. Transwell的孔径选择:一般使用0.4 µm孔径,防止细胞穿过隔膜。
  3. 培养时间:根据实验的需要设定共培养时间,短时间的共培养可以评估信号传递,长时间共培养可能影响细胞增殖和分泌功能。

Transwell共培养方法是一种重要的实验技术,通过模拟细胞间的间接相互作用,可以提供更深入的细胞信号传递和肿瘤微环境互动的研究工具。不妨利用这一方法,开展相关实验,深入探索细胞生物学和肿瘤研究的领域吧!

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