qPCR实验的Ct值合理范围及异常处理方法
qPCR实验的Ct值合理范围及异常处理方法
Ct值是荧光定量PCR(qPCR)实验中一个重要的结果指标,用于计算基因表达量差异或基因拷贝数。那么,什么样的Ct值才是合理的?如何保证Ct值的有效范围?本文将为您详细解答。
Ct值的定义与作用
Ct值,即Cycle Threshold,是指在qPCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的荧光阈值时所对应的扩增循环数。简单来说,Ct值就是qPCR中起始模板扩增达到一定产物量时所对应的循环数。
Ct值的主要作用包括:
指数扩增与模板量的关系:理想情况下,qPCR中的基因经过一定的循环数被指数扩增而积累,扩增循环数和产物量之间的关系是:扩增产物量=起始模板量×(1+En)循环个数。当扩增产物量达到“一定产物量”时,此时循环个数为Ct值,处于指数扩增时期。Ct值与起始模板量的关系是:模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系。起始模板量浓度越高,Ct值越小;起始模板量浓度越低,Ct值越大。
扩增曲线与荧光阈值:qPCR扩增产物量是以荧光信号的形式直接呈现,也就是扩增曲线。在PCR早期,扩增处于理想情况下,循环数较少,产物积累少,产生荧光的水平不能与荧光本底背景明显地区别,之后荧光的产生增加进入指数期。可以在PCR反应刚处于指数期的某一点上来检测PCR产物的量,以此作为“一定产物量”,并且由此来推断模板最初的含量。因此,一定产物量对应的荧光信号强度,也就是荧光阈值。
在PCR的后期,扩增曲线不再呈现指数扩增,进入线性期和平台期。
- Ct值的重现性:PCR循环在到达Ct值所在的循环数时,刚刚进入真正的指数扩增期,此时微小误差尚未放大,因此Ct值的重现性极好,即同一模板不同时间扩增或同一时间不同管内扩增,得到的Ct值是恒定的。
Ct值的合理范围
扩增效率En:PCR扩增效率是指聚合酶把待扩增基因转变生成扩增子的效率。由1个DNA分子转变生成2个DNA分子时的扩增效率为100%。扩增效率常用En表示。影响扩增效率的因素包括PCR抑制剂、引物设计、反应程序、试剂混匀情况、扩增子长度以及qPCR试剂等。
Ct值的范围:Ct值的合理范围通常为15-35。Ct值小于15,认为扩增在基线期范围内,未达到荧光阈值。理想情况下,Ct值与模板起始拷贝数的对数存在线性关系,也就是标准曲线。通过标准曲线,扩增效率为100%时,计算出基因单个拷贝数定量的Ct值在35左右,若大于35,理论上模板起始拷贝数小于1,可认为无意义。
对于不同的基因Ct范围,因起始模板量中基因拷贝数和扩增效率不同,需做出该基因的标准曲线,计算出基因的线性检测范围。
- Ct值的影响因素:在理想条件下,起始模板量和En会对Ct值产生影响。模板质量或者扩增效率的差异会造成Ct值偏大或过小。
Ct值过大或过小的解决方法
- Ct值过大的原因及解决方法:
- 原因:模板浓度低或存在PCR抑制物;扩增效率低
- 解决方法:提高模板浓度;或提高RNA或cDNA稀释比例;或重新制备模板;降低退火温度,或选用二步法扩增;组分和体系充分混匀;优化反应程序;或尝试更换试剂
- Ct值过小的原因及解决方法:
- 原因:模板浓度高;NTC和NRC存在污染;引物设计不合适
- 解决方法:减少模板RNA量;或更高比例稀释cDNA;重新更换所有试剂;或使用UDGase防污染试剂;优化程序,避免非特性扩增
本文详细介绍了Ct值的定义、作用、合理范围以及Ct值过大或过小的解决方法,希望对从事qPCR实验的科研人员有所帮助。
本文原文来自yeasen.com